Microscope Révolution / Andor

A. Microscope inversé Olympus IX81-ZDC motorisé avec tourelle objectif piezzo-électrique et contrôle de dérive en Z

B. Equipement de microscopie de fluorescence conventionnelle pour la vision binoculaire des échantillons fluorescents :

C. Contraste interférentiel (DIC x60, x100), prismes DIC, Polariseur, Analyseur

D. Equipement pour la microscopie confocale de fluorescence :

Tête Yokogawa CSU-X1 (5000 tours/mn)
Combiné laser comprenant 4 lasers contrôlés par AOTF
- laser solide à diode pompée 405nm, 50mW
- laser solide à diode pompée 488nm, 50mW
- laser solide à diode pompée 5615nm, 50mW
- laser solide à diode pompée 640nm, 40mW

miroirs dichroïques : simple à 488nm et quadruple pour les lasers 405, 488, 561 et 640nm
Roue de filtres à l’émission : 447nm (DAPI), 465nm (CFP), 525nm (GFP), 542nm (YFP), 607nm (RFP), 685nm (Cy5), 512nm/630 (GFP et RFP), 464nm/547 (CFP/YFP), 525/600/690 (GFP, RFP, CY5)
Unité FRAP/PA
Unité FRAP/PA

E. Divers :

Platine motorisée en XY ProscanII (Prior)
Système d’incubation contrôlée en température et régulée en CO²
- Petite chambre thermique sur platine avec contrôleur de température permettant de travailler sur des petites boites de culture.
- Accessoires d’enrichissement en CO²
- Système permettant la perfusion de milieu de culture
- Perfusion 6 voies
Table anti-vibration
Stockage des images sur DVD – Transfert sur unité de stockage (1000Go) du serveur du Pôle Biologie Santé (XRaid)

Pentium IV, 3,2 GHz, 2 GB RAM, 120 GB disque dur, DVD/CD drive et graveur de CD et DVD, carte réseau, clavier et souris sans fil, carte graphique Radeon 9600 avec 128MB, système d’exploitation Windows XP
Logiciel FluoView : acquisition et analyse des image

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