Bouton Résa

Microscope confocal « à disque rotatif » : Revolution/Andor

La priorité sera donnée à l’observation de cellules vivantes nécessitant un environnement contrôlé en CO2 et température. Acquisition de signaux en fluorescence et/ou transmission au cours du temps :

  • FRET (Fluorescence Resonance Enerfy Transfert) pour étudier les interaction moléculaires
  • FRAP (Fluorescence Recovery After Photobleaching) permet de suivre la dynamique de molécules fluorescentes
  • Photo-activation, décageage

 

Microscope confocal SPECTRAL : Olympus FV1000

Bien adapté à l’observation de multimarquages (de UV à rouge lointain), 2D et 3D sur échantillons fixés. Sur cellules vivantes mis en oeuvre de protocoles d’acquisition temporelle (FRAP, FRET, time-lapse) et toute expérimentation nécessitant l’utilisation simultanée de la source d’excitation proche UV (décageage à 405nm)

  • Vitesse standard 500 Hz, 1 image par seconde à 512 * 512 pixels
  • Scan bi-directionnel rapide à 2000 et 4000 Hz : 4/8 images par seconde à 512*512 pixels, 45/90 images par seconde à 512*32 pixels, jusqu’à 16 images/secondes en 256*256 – 1msec en line scan

Le système équipé pour la détection spectral : séparation de fluorophores à spectre d’émission proche, suppression de l’autofluorescence, colocalisation

  • Sélection intuitive des réglages pour la détection des fluorochromes
  • Résolution spectrale de 2nm, linéaire dans le spectre visible
  • Scanning spectral : 100 nm par millisecondes (point scanning)

Contact

Responsable: Anne CANTEREAU

Localisation: Plateforme principale, Aile C, 1er étage, Bâtiment 37